7 февраля, 2023

Лечение и реабилистация черных стрижей Apus apus

лечение и кормление черных стрижей

Введение

Черный стриж Apus apus – вид, который нашел оптимальные условия для гнездования в антропогенном ландшафте и селится не только в дуплах деревьев, расщелинах скал, в норах на береговых обрывах, но и в искусственных гнездовьях, в пустотах построек, под черепицей и шифером, как в отдельно стоящих домах, так и в крупных городах.

Специфика биологии вида такова, что птенцы стрижей рано обретают полную самостоятельность и автономность, лишаются опеки родителей раньше, чем вылетают из гнезда. В связи с этим смертность птенцов в колониях черных стрижей довольно высока. Размножение птиц в антропогенном ландшафте приводит к тому, что молодые стрижи часто попадают в руки человека. В естественных условиях гибель птенцов обуславливается такими факторами, как температурный режим окружающей среды, длительные дожди, снижение кормовой базы в неблагоприятные дни, что постоянно происходит из года в год. Как следствие, родители улетают на несколько дней на это время, и птенцы остаются без корма. Как оказалось, максимально птенец выдерживает 9-дневную голодовку, но при этом значительно ослабевает. Такую голодовку птенцы выдерживают благодаря своей адаптивной способности значительно снижать температуру собственного тела и при этом оставаться жизнеспособными. Тем не менее, будучи голодным, нередко птенец покидает гнездо и с земли попадает в руки к человеку. При этом птенцы могут быть оперены или находиться еще в пуховом наряде.

Горожане выражают готовность помочь птице, попавшей в беду, но из-за недостатка знаний о биологии вида, его особенностях и потребностях оказываются не в состоянии этого сделать, так как черный стриж относится к наиболее сложному в содержании в неволе виду [3].

Материалы и методы

На протяжении 2013 года с 1 мая по 1 сентября в госпиталя птиц «Зеленый попугай» расположенные в Москве и Санкт Петербурге (Васильевский остров), поступали стрижи с различной степенью ослабленности, связанной как с гнездовым периодом, погодными условиями, травмами, различными нарушениями обменного характера, так и инфекционными и инвазионными причинами заболеваний. Птицы помещались в реанимационное помещение, в брудера, где у них производили забор анализов для лабораторной диагностики методами ПЦР, на общую микробиологию, ИФА. Также проводилась инструментальная диагностика при помощи рентгеновского аппарата и ультразвукового сканера фирмы Sonoage.

Все исследования черных стрижей Apus apus проводились на оборудовании госпиталя птиц «Зеленый попугай». Назначение антибактериальных средств проводилось в строгом соответствии с данными микробиологических исследований и определением чувствительности к антибиотикам выявленных патогенных микроорганизмов. Травмированным птицам в области трубчатых костей конечностей проводилась иммобилизация методами, адаптированными к хирургии птиц, по сути являющимися в ряде случаев реконструктивными методами лечения. Использовались медицинские спицы по стандартным ветеринарным методикам, однако с применением наложенных резьб созданным нами аппаратом «Лавром». Использовали инъекционную и газовую анестезию.

После клинического выздоровления стрижам предоставлялась возможность свободного полета у помещений госпиталей птиц. Во время работы со стрижами мы отрабатывали некоторые дрессировочные моменты стрижей, для приучения их к самостоятельному питанию в условиях неволи. Отрабатывались различные способы кормления стрижей при содержании их в неволе.

Исследования

Кормление стрижей

По нашим наблюдениям, для быстрого и хорошего развития птенцов стрижей можно использовать смешанное кормление (как наиболее экономичное), что позволяет достаточно быстро восстановить слабого птенца и быстрее выпустить стрижа, так как сроки выпуска очень ограничены по времени, в середине августа стрижи улетают, а в клетках они не живут.

Оценку питательности кормов можно проводить по крахмальному эквиваленту Кельнера, однако данный эквивалент только описывает способность стрижа усваивать углеводы, жиры и протеины и тем самым образовывать жир. В принципе этот коэффициент достаточен для схематичного определения питательности корма при выкармливании слетков стрижа (как и других слетков воробьиных) или же поздних птенцов, так как такие птицы весьма юного возраста содержатся в неволе непродолжительное количество времени, и к тому же стрижи предназначаются только для выпуска на волю. Перед перемещением дальние мигранты, а к ним относятся и стрижи, целенаправленно накапливают жир в своих жировых депо, с целью совершения дальних бросков к местам зимовки. И, хотя индекс Кельнера является устаревшим для составления кормовых рационов сельскохозяйственной птицы, тем не менее, как рабочая модель он приемлем во время кратковременного пребывания стрижей у человека и их восстановления перед выпуском на волю.

Итак, мы знаем, что 1 г перевариваемого белка по способности к жироотложению равняется 0,94 г крахмала, соответственно 1 г перевариваемого жира равняется 2,4 г крахмала, 1 г перевариваемого безазотистого экстрактивного вещества равняется 1,0 г крахмала. Таким образом, при приготовлении смеси 72 г для насекомоядных птиц мы учитываем все его составляющие по крахмальному эквиваленту. Перевариваемый желток и белок куриного яйца – 40 г + (кальцинированный творог) – 20 г + тертое мясо 5 г + свежая кровь – 1 г + гамарус 2 г + дафния 2 г = 70 г т.е. крахмальный эквивалент = (0,94 × 70) = 65,8. Безазотистые экстративные вещества – мелко тертая морковь, одуванчик, капуста, кабачки – 2 г, т.е. крахмальный эквивалент (1 × 2) = 2,0 (тут следует отметить, что мы морковь и другую зелень применяем в виде предварительно накормленных ею сверчков и тараканов – измельченных и введенных в кормовую смесь для насекомоядных птиц. Итак, общий для смеси для насекомоядных птиц крахмальный эквивалент составит 67,68, что для стрижей составит получение энергии в размере 28,08 условного жира, который в конечном счете уходит на процесс терморегуляции, пищеварения, жизнедеятельности внутренних органов и на наращивание мышечной и жировой ткани.

Из вышесказанного видно, что в качестве смеси для стрижей мы используем такие заменители естественных кормов, как сваренный вкрутую яичный белок, творог, вареное мясо, сухой гамарус или дафнию, кровь птиц или млекопитающих. Таким образом, мы описали так называемую нулевую смесь (табл. 1).

Содержание аминокислот в составляющих кормов для стрижей

Для формирования лучшего состава мы вводим трехуровневое кормление стрижей, во втором уровне мы разбиваем нулевое кормление дачей ночных бабочек, сверчков (рис. 1), тараканов, муравьиных коконов, личинок мучного хруща и др. насекомых, вплоть до кузнечиков, причем при скармливании насекомых, обладающих мощным хитиновым покрытием, его удаляем во избежание поглощения стрижами ненужного балласта. Причем, если первое кормление стрижей было только нулевой смесью, то второе кормление стрижей осуществляется дачей только одних насекомых. На третьем уровне, в нулевую смесь дополнительно вводятся витаминные препараты, которые содержат витамины А, D, E, группы B, никотиновую кислоту, C, препараты содержащие кальций, магний, калий, а также глюкозу в виде нескольких капель меда.

Кормовые сверчки / корм для стрижей
Рис. 1. Кормовые сверчки

Кальций же может быть введен в виде творога, полученного методом смешения в горячем виде натурального молока с хлористым кальцием. Для улучшения обмена веществ мы используем препараты таун, аптеринкоготь, аптерин, а для нормализации иммунитета – препарат иммуним, которые даются в виде капельки воды в ротовую полость – 1–2 раза в день.

Следует отметить, что монопитание, как смесями для насекомоядных птиц без содержания насекомых (на основе заменителей), так и некоторыми видами кормовых насекомых (такими, как, например, зоофобус или мучной червь) приводит к функциональным нарушениям работы печени и почек. Поэтому из года в год нами практикуется смешанное питание, которое достаточно полно обеспечивает необходимыми микроэлементами, аминокислотами и витаминами организм растущего стрижа. Витамины мы дозируем из следующего расчета на 100 г корма. А, ИЕ – 750, Д3, ИЕ – 150, В1, mg – 0,05, В2, mg – 0,4, В3, mg – 0,6, В5, mg – 3, В4, mg – 50, Е, mg – 0,6, К, mg – 0,2, В12, mg – 0,001, Вс, mg – 0,05, В6, mg – 0,2, Zn – 5 mg, Fe – 25 mg, Iod – 0,03, Se – 0,01.

Не следует кормить стрижей и особенно птенцов личинками мух и дождевыми червями. Мучной хрущ может быть использован при кормлении стрижей в очень ограниченном количестве, т.к. за короткий срок вызывает отложение солей и воспаление суставов (нарушение работы почек), а личинки мух кроме всего прочего вызывают периодически острые кишечные инфекции (например, сальмонеллез), приводящие к гибели птенцов. Дождевые черви, в свою очередь, являются переносчиками эндопаразитов (гельминтов).

выкармливание стрижей
Рис. 2. На данном фото продемонстрирован слеток стрижа, который выкармливался только
кормовыми насекомыми (мучной червь, зоофобус
с незначительным добавлением сверчков) в
течение 1,5 месяцев. У него при ультразвуковом
обследовании обнаружили функциональные и
органические изменения в паренхиме печени
(гиперэхогенный локус в паренхиме печени),
которые практически отразились на нарушении
развития опахал второстепенных маховых перьев,
хотя при этом первостепенные маховые перья у
него развиты в пределах нормы.

Последствия монопитания иллюстрируют нижеприведенные фотографии (рис. 2). Прослеживается искривление гребня грудной кости, что говорит о нарушении кальциевого обмена и наличия рахита средней степени тяжести (см. ниже по тексту). Что хорошо видно на следующем снимке (рис. 3).

В то же время кормление полноценными кормовыми смесями и насекомыми дает наиболее качественное соотношение аминокислот, микроэлементов и витаминов, что позволяет обеспечить всеми необходимыми аминокислотами стрижа, и тем самым избегнуть дисфункций паренхиматозных органов, что отражается в более качественном развитии оперения стрижей в условиях неволи.

На рисунке 4 показано состояние второстепенных и первостепенных маховых перьев у слетка стрижа, выращенного на смешанном типе кормления. Слеток готов к выпуску. Предварительно перед выпуском можно отпарить (крутым кипятком) и затем просушить маховые перья выпускаемого стрижа.

Рис. 3. Искривление гребня грудной кости.
Рис. 4. Отпаривание крутым кипятком маховых перьев черного стрижа.

Частота кормления стрижей регламентируется прежде всего их желанием получения следующей порции пищи и полной пустоты зоба (просиживание зоба). В начале, приходится кормить стрижат с утренней зорьки до вечерней зорьки каждые 2–3 часа, затем по мере их взросления период между дачей порции корма удлиняется. Если взять за эквивалент чищенных сверчков (без головогруди, крыльев и лапок), то в среднем один молодой стриж съедает по 45–50 сверчков в сутки за 4–5 кормлений в день. Следует отметить, что коммерческая стоимость выкармливания одного стриженка достаточно высока и поэтому 99 % опрошенных владельцев стрижат (горожан Москвы и Санкт-Петербурга) не готовы выплачивать такие суммы на их кормление до момента выпуска.

Так в среднем цена одного сверчка (в розницу) в зоомагазинах на лето 2013 года равнялась порядка 5 руб., что в свою очередь оборачивалось суммой 7500 рублей одних трат в месяц (порядка 200 долларов на одного стрижа). Это большая сумма, так как она приближается к одной минимальной месячной зарплате или пенсии среднестатистического жителя нашей страны. Поэтому экономическая составляющая в выкармливании стрижей в условиях России заставляет нас искать более экономичные корма для выкармливания птиц до момента их выпуска, чему более всего отвечают кормовые смеси и самостоятельно добываемые муравьиные яйца.

Поступление стрижей в госпиталь птиц

Поступление черных стрижей подчиняется из года в год следующим закономерностям. Из рисунка 5 видно, что приток стрижей совпадает с появлением черных стрижей в Москве.

 Присутствие черных стрижей во время размножения в Москве и Санкт-Петербурге
Рис. 5. Присутствие черных стрижей во время размножения в Москве и Санкт-Петербурге.

Первые стрижи появляются в первых числах мая, образуя первый пик численности попавших в беду птиц, затем количество стрижей спадает в июне к минимальному количеству, а с появлением птенцов возрастает в июле до максимального значения. Таким образом, в мае-июне к нам попадают ослабленные или травмированные взрослые стрижи, а начиная с июля и до начала сентября – птенцы разного возраста, что составляет 23,07 % от общего числа стрижей и на них падает основная работа по реабилитации и выпуску стрижей в природу. И эта часть работы наиболее результативна. Улетают черные стрижи из Московских (55°45’13 северной широты), Санкт-Петербургских (59°53’66 северной широты) в конце августа – 31 числа. Примечательно, что как и всех дальних мигрантов, срок их появления в средней полосе России строго регламентирован, и всегда следует ожидать этих птиц в самом начале мая и наблюдать их полное исчезновение в последних числах августа.

Таким образом, черные стрижи находятся у нас в вышеименованных городах ровно 4 месяца. Поздние экземпляры птиц, которых приносят в госпиталя птиц Зеленый попугай в сентябре-октябре, относятся к стрижам, которых содержали дома, или как исключительный факт подбирают на улицах города (последний отмеченный нами случай в г. Москве был 11 сентября 2013 года).

Болезни черных стрижей

Состояние стрижей, попадающих в руки человека (данные госпиталя птиц «Зеленый попугай»)

Лидером по попаданию стрижей в госпиталь птиц являются травмированные птицы (рис. 6), а их птенцы составляют меньший, но все же один из наиболее многочисленного контингента пациентов госпиталя птиц в Москве и Санкт Петербурге.

Около 62 % от общего количества в госпитале птиц составляют травмированные стрижи с различными травмами, в основном полученными в полете или после приземления на землю (табл. 2).

Инфекционные и инвазионные болезни стрижей

С организацией в нашей лаборатории методов исследования птиц, базирующихся на полимеразно цепной реакции, мы стали получать данные, несколько отличающиеся от данных ПЦР других коммерческих лабораторий, и, как оказалось по нашим данным, распространение орнитоза среди стрижей в несколько меньше, чем это предполагалось ранее. Возможно, такие ложноположительные результаты коммерческих городских ПЦР лабораторий связаны с большим потоком материала, где неизбежно проявляется элемент взаимной контаминации ДНК исследуемого материала. В то же время при маленьких потоках и постоянной смене места нахождения ПЦР лаборатории (мы используем лабораторию и в полевых условиях), такая взаимная контаминация материала менее вероятна, и поэтому результаты исследований наиболее объективны.

Болезни черных стрижей
Рис. 6. Болезни черных стрижей.

В принципе, это говорит о том, что ПЦР диагностика должна быть у каждого исследователя, и для большей точности сверяться с данными иных централизованных лабораторий. Тем самым, следует проводить дополнительную поверку не только своего оборудования, но и условий их эксплуатации. Наши полученные лабораторные данные показали меньшее содержание орнитоза в пробах взятых у диких птиц и городских голубей. Хотя мы не исключаем такой возможности что в Москве в 2008–2011 гг. во время использования централизованной лаборатории в ВГНКИ была более неблагоприятная обстановка по орнитозу среди голубей (которые и служат источником заражения для стрижей), нежели позднее в 2012 и в 2013 году.

Соотношения различных физиологических и патофизиологических состояний стрижей, попадающих в госпиталя птиц Санкт-Петербурга и Москвы
Таблица 2. Соотношения различных физиологических и патофизиологических состояний стрижей, попадающих в госпиталя птиц Санкт-Петербурга и Москвы

Орнитоз

Сравнение заболевания и распространенности орнитоза среди стрижей, голубей и попугаев.

Встречаемость орнитоза у черных стрижей нами обнаружено в 2,77 % случаев – видимо инфицированных от совместного гнездования с городскими голубями. Однако при этом клинических признаков заболевания при носительстве у них обнаружено не было. При исследовании на орнитоз птиц – 72 исследования 472 голубей, – проведенных в период с 14.01.12 года до 15.08.13, как одиночных диких особей с клиническими признаками болезней, так и при обследовании голубятен обнаружен процент распространения орнитоза порядка 8,33 %. Клинические признаки болезни орнитоза у голубей проявлялись в бронхопневмонии, заболевании печени.

При сравнении данных по орнитозу диких стрижей и голубей с живущими в условиях неволи такими птицами, как попугаи, в период с 11.01.2012 по 13.09.2013 гг., оказалось, что процент распространения орнитоза у попугаев по отношению к стрижам больше, и равняется 6,08 % (было обследованы 170 голов различных видов попугаев поштучно, и 536 голов попугаев в виде партий в среднем по 50 голов, у которых брали сборный помет). Среди представленных птиц были обследованы следующие виды: волнистый попугай-чех, волнистый попугай, корелла или нимфа, краснохвостый жако, бурохвостый жако, венесуэльский амазон, амазон Мюллера, желтолобый амазон, эклектус или благородный попугай, белохохлый какаду, скалистый патагонский попугай, синежелтый ара, гиацинтовый ара, солдатский ара, масковый неразлучник, лютина, неразлучник Фишера, розовощекий неразлучник, аратинга.

Из них положительный результат на орнитоз со следующими клиническими признаками болезни был обнаружен у аратинга (бронхопневмония), волнистого попугая (заболевание кардиопатией), другого волнистого попугая (конъюнктивит), солдатского ара и гиацинтового ара (клинические признаки заболевания инфекционным гепатитом), венесуэльского амазона (клинические признаки аптериоза), кореллы (без каких-либо клинических признаков болезни), краснохвостого жако, погибшего вследствие хронической бронхопневмонии, и двух других жако, страдающих заболеваниями легких, а также одного жако, являющегося пульмонологическим больным и страдающего заболеванием почек и трихоптиломанией.

У некоторых положительно реагирующих на орнитоз попугаев была также обнаружена секундарная условноположительная микрофлора – Escherichia coli, Staphilococcus spp, Spirilla spp, Clostridium spp, Candida albicans.

Таким образом, соотношение распространенности орнитоза среди трех групп птиц в Санкт-Петербурге и Москве можно представить в виде следующего соотношения: стрижи 2,77 % / голуби – 8,33 % / попугаи – 6,08 %. Микоплазмоз стрижей Микоплазмоз широко распространен среди стрижей и он отмечается в 28,57 % случаев, что не на много меньше если брать все виды и породы птиц, с которыми нам приходится работать – в среднем у всех птиц носительство микоплазмоза составляет 32,43 %. Причем среди них присутствуют не только птицы с клиническими признаками каких-либо болезней, но и птицы, не имеющие видимых клинических отклонений в здоровье и при этом успешно живущие в дикой природе. Однако носительство микоплазмоза в примерно таком же процентом соотношении встречается и у других диких птиц, проживающих на воле. При этом клинических признаков заболевания у вышеупомянутых птиц не прослеживается.

Так как мы сравнивали полученные данные по микоплазмозу с другими группами птиц, проживающими на воле, то оказалось, что среди черных дроздов, проживающих на территории ПТЗ (Приокско Террасный заповедник), микоплазмоз встречается в 54,54 % случаев, также микоплазмоз нами был обнаружен в ПТЗ и у рябчиков. У проверенной нами выборки голубей с клиническими признаками заболевания из дикой городской популяции оказалось, что микоплазмоз у них встречается в 48,38 % случаев. В выборке из попугаеобразных птиц в количестве 225 птиц оказалось, что носительство микоплазмоза у них составило 30,66 %.

Следует отметить, что в основном среди носителей микоплазмоза у голубей и попугаев присутствовали такие клинические признаки заболеваний респираторной системы, как бронхиты, бронхопневмонии, риниты, синуситы, заболевания воздухоносных мешков. Что же касается стрижей, то микоплазмоз отмечался у погибших птиц на фоне истощения и обезвоживания при явлениях ацидоза, а также среди живущих птиц, страдающих рахитом. Итак, суммируя, мы получаем следующую пропорцию распространенности этой инфекции среди птиц: стрижи – 28,57 % / черные дрозды – 54,54 % / голуби – 48,38 % / попугаи – 30,66 %. Среднее значение среди всех исследованных птиц (407 птиц) составило 32,43 %.

Несмотря на определенные сомнения по поводу патогенности микоплазмоза среди диких птиц, мы должны учесть, что в домашнем птицеводстве микоплазмоз является серьезной проблемой, вызывая эпизоотии в определенном птицеводческом хозяйстве. Поэтому нам еще предстоит выяснить роль микоплазмоза в патогенезе черных стрижей.

Трихомоноз

В таблицу не вошли данные по трихомонозу, так как мы специально не изучали данный вопрос методом статистического анализа, однако периодически данные простейшие жгутиковые паразиты встречаются и у стрижей. Видимо, это обуславливается тем, что в городских условиях некоторые стрижи гнездятся в непосредственной близости с голубями. Также встречается и сальмонеллез в 18,18 % случаев.

трихономоз у стрижей
Рис. 7. Характерные желтовато-творожистые наложения на слизистой у стрижа с трихомонозом.

Частичная хирургия (травматология) стрижей

Суставные переломы, а в частности суставные переломы кисти практически безнадежны для прогноза благоприятного исхода и возврата стрижа в природу. Полное восстановление летательной функции крыла после лечения в таком случае является маловероятным событием. К сожалению такие переломы у стрижей наиболее часты и они встречаются в 24,21 % случаев среди травмированных стрижей.

травмы стрижей
Таблица 3. Травматологические заболевания черных стрижей, попадающих в госпиталя птиц Санкт Петербурга и Москвы

Также наибольшую настороженность в отношении благоприятного исхода являются переломы плеча у стрижей. Это связано в первую очередь с возникновением анкилозов поврежденных суставов и последующим анкилозом локтевого сустава после проведенного интермедулярного остеосинтеза. Опять же специфика строения трубчатых костей крыла не позволяет сколь-либо успешно прогнозировать восстановление поврежденной конечности даже после проведенного остеосинтеза, так как при введении в костномозговой канал спиц – последняя заполняет все пространство и практически прекращает положительную трофику оперированной кости. К тому же введенная спица существенно утяжеляет вес поврежденной конечности. Это сказывается неблагоприятно на процесс образования костной мозоли и последующей консолидации отломков. Именно поэтому, интермедулярный остеосинтез трубчатых костей стрижей, крайне неблагоприятен в прогностическом отношении. Остальные травматологические заболевания стрижей при лечении более благоприятны, включая переломы костей предплечья, а это 21 % из всех хирургических болезней. Это связано в первую очередь с тем, что можно применить внешнюю иммобилизацию поврежденной конечности наложением различных повязок, использованием лангеток с соответствующими материалами или в сочетании с очищенными очинами более крупных видов птиц.

Общие принципы техники хирургических операций, применяемых нами на черных стрижах

Травмы черных стрижей
Рис. 8. Травматологические заболевания черных стрижей.

Предварительно, перед операцией мы внутримышечно инъецировали стрижам 1%-й раствор атропина сульфата. Затем, через 20 минут проводили предварительное внутримышечное введение в качестве нейролептанальгезии небольшого количества золетила, состоящего из тилетамина гидрохлорида и золазепама гидрохлорида. Затем проводим газовый наркоз. При газовом наркозе, в зависимости от способа введения анестетика, применяем эфир для наркоза (Aether pro narcosi stabilisatum) или изофлуран (Isofluranum). В случае применения мононаркоза проводим внутримышечное и внутривенное введение такого препарата, как Calipsoveti 2%, или, внутримышечно, золетил.

Следует отметить высокую стоимость газовых аппаратов, которые используются в ветеринарной анестезиологии. Однако, мой долг описать здесь более дешевую конструкцию, позволяющую минимизировать затраты и даже проводить анестезию в полевых условиях для стрижей. При этом используется принцип открытого дыхательного контура, основанный на капельной анестезии выбранным легкоиспаряющимся анестетиком через кусочек марли и постоянной подачи атмосферного воздуха через трубку в контейнер, где находится голова птицы. Для полевой организации птичьего открытого дыхательного контура необходимо только наличие воздушного насоса, например, ингалятора (даже годится аквариумная помпа, особенно предназначенная для обслуживания нескольких аквариумов) и обычной пластиковой бутылки из-под воды с отрезанным дном – контейнера, трубки из-под системы переливания крови, небольшого куска проволоки и кусочка ваты (марли). Голова птицы помещается со стороны вскрытого дна бутылки, замененного любым пластмассовым пакетом с вырезанным отверстием для прохождения головы птицы. Щелями между шеей и таким «мягким воротником» можно пренебречь. Инъекционно в вату (марлю) вводится около 2 мл анестетика, и такой мягкий испаритель закрепляется на проволоке, затем через горлышко продвигается поступательно в направлении ноздрей оперируемой птицы. Все это время через трубочку от ингалятора вводится струя воздуха прямо в пластиковую бутылочку, в которой находится голова птицы. После введения птицы в наркотический сон (вводный, более концентрированный наркоз) вата на проволоке отодвигается от ноздрей и таким образом доза вводимого наркоза уменьшается и становится поддерживающей. По мере расходования газового наркоза в наш испаритель вкалывается (импровизированный капельный способ) новая доза препарата. Зачастую такой способ бывает более эффективен, чем использование какого-либо иного наркозного аппарата.

Данный способ подачи наркоза мы регулярно используем при работе вне стен госпиталя, особенно в экспедиционных условиях. Есть противопоказания для анестезиолога и хирурга – это повышенное загрязнение окружающей среды парами анестетика. Поэтому, в случае проведения операции в замкнутом пространстве желательно предусмотреть хорошую вентиляцию помещения, хотя бы путем открытых окон или дверей. В пользу предлагаемого нами способа говорит тот факт, что коммерческие аппараты для газового наркоза в настоящее время весьма дороги, их цена составляет 4000–6000 долларов и выше. Эти аппараты также сложны для перевозки, и тут наш аппарат опять сильно выигрывает на фоне таких дорогих и громоздких конструкций.

Таким образом, газовый наркоз вполне доступен в любом регионе любому орнитологу, любому ветеринарному врачу, сталкивающемуся с необходимостью оказания птицам ветеринарной помощи, или при рутинной практике разводчиков декоративной птицы во время определения пола птицы при лапароскопии. Применение эфира в качестве газового наркоза также существенно снижает себестоимость операции до минимума – порядка 20–100 рублей за операцию (с учетом всех расходных материалов). Это становится особенно важным, когда речь идет об обеспечении оказания помощи диким птицам, на лечение которых финансовых средств никем не выделяется. К сожалению, опять приходится думать об экономической составляющей в условиях современной России.

После торможения вегетативной и центральной нервной системы птицы в месте операционного поля по линии разреза проводим инфильтрационную анестезию при помощи 0,5%-голидокаина, применяем эпидуральную анестезию путем перпендикулярного вкалывания иглы между позвонками и в зоне проекции нервных окончаний оперируемой поврежденной конечности и вводим 0,5–1%-го теплого раствора лидокаина. При проведении остеосинтеза предплечья обычно употребляем спицы Киршнера, используемые в рутинной медицинской практике. Обычно в ветеринарии такие спицы используют, когда другие методы фиксации костных отломков были неудачны. В медицине спицы Киршнера употребляют при лечении переломов трубчатых костей, скелетной фиксации, остеотомии, коррекции деформаций, артродезе. Мы же для препятствия осевого сдвига костной ткани отломков трубчатых костей на спице накатываем винтовую дорожку, что и является отличием наших операций от аналогичных операций, использующих такие же спицы Киршнера. Благодаря нашей нарезке, спицы приобретают дополнительную фиксирующую способность. За счет самостоятельного накатывания резьбы мы также существенно снижаем себестоимость операции.

Рис. 9. Аппарат для накатки резьбы «Лавром». Авторы: Лавров А.В. и Романов В.В.

Для нарезки резьбы мы используем изготовленный нами ранее аппарат для накатки резьбы, представляющий собой парные ролики, выставляемые под углом, определяющим искомый «шаг резьбы» (рис. 9). После сопоставления весьма небольших дистальных отломков локтевой и лучевой кости с проксимальными длинными концами тех же костей соответственно, мы ввинчиваем через метакарпальный сустав в костномозговые каналы измененные нами спицы Киршнера. Предварительно перед операцией проводится инфильтрационная анестезия в области отломков трубчатых костей. Обезболивающий раствор инъецируем между концами отломков и окружности места перелома. После введения и фиксирования в кости спиц, свободный конец отпиливаем и устанавливаем дополнительную иммобилизирующую повязку быстротвердеющим пластиком, чем достигаем дополнительной жесткости консолидируемых отломков костей.

Рахит птиц

Следует несколько поподробнее остановиться на рахите птенцов стрижей. В частности, мы обнаружили, что количество случаев рахита среди стрижей растет к концу августа. При этом явные проявления гипокальциемии отражаются не только на оперении, общей слабости, судорогах, но и на искривлении гребня грудной кости, и на переломах трубчатых костей, в частности, симметричных плечевых переломах, при этом у стрижей образуются устойчивая костная мозоль (правда с экзостазом), идет стабилизация конечностей, однако, с сокращением плечевых костей с последующей длительной контрактурой m.biceps brachii, m. anconeus longus, m.deltoideus (рис. 10).

рахит у стрижа
Рис. 10. Симметричный гиперостоз плечевых костей с контрактурой мышц вследствие рахита у стрижа.

Среди подобранных слетков стрижей, страдающих рахитом, кроме видоизменений опорно-двигательного аппарата обнаружены дополнительно еще три клинических признака рахита (табл. 4, рис. 11).

рахит у стрижа
Таблица 4. Внешние патофизиологические признаки, присутствующие при рахитах черных стрижей, которые попадают в госпиталя птиц Санкт Петербурга и Москвы (процент обнаружения патогномичных симптомов)
болезни стрижей
Рис. 11. Встречаемость в процентах частных клинических симптомов при рахите черных стрижей.

При этом видно, что клинический признак слабости наиболее часто встречается среди таких больных слетков, впрочем следует оговориться, что он все-таки неспецифичен, более патогномичными были и остаются такие клинические признаки заболевания, как судороги в 7,14 % случаев, измененное или плохое оперение в 25 % случаев и искривления или видоизменения костного аппарата стрижей. Но если незначительно искривленный гребень грудной кости или кости нижних конечностей не являются противопоказанием к выпуску на волю, то в отношении видоизмененных передних конечностей сложнее: восстановить с гиперостозом такую конечность достаточно нереально, да еще за столь малый срок, который нам предоставляет птенец стрижа, с тем чтобы тот еще улетел на зимовку в Африку. Тут еще надо учитывать реабилитационное время для полного восстановления летательной функции прооперированной ранее птицы. Все это в совокупности не позволяет сделать благоприятный прогноз для данного индивидуума.

Лечение стрижей

Если при травмах стрижей использовалось стандартное хирургическое лечение применяющееся в ортопедической практике для птиц (внешняя иммобилизация, интермедуллярный и экстрамедуллярный остеосинтез), то при инфекциях или инвазиях и различных нозологических терапевтических болезнях применялись другие способы лечения. В частности, при обнаружении грибковой или бактериальной инфекции в лаборатории госпиталя птиц Зеленый попугай мы определяли чувствительность микробов к антибиотикам и только потом по данным чувствительности применяли соответствующий антибиотик.

Безоглядное применение антибиотиков у многих декоративных и диких видов птиц (по прописи без учета чувствительности) является порочной практикой некоторых специалистов и абсолютно неприемлемо при рутинном лечении воробьиных птиц. В первую очередь, это связано с различными противопоказаниями любого назначаемого антибиотика. В случае несовпадения эффективности антибиотика против микробов дополнительно к болезненному состоянию птицы возникает лекарственная нагрузка, которая увеличивает процент гибели стрижей. В случае же отсутствия резистентности патогенных микробов к препарату – птицы выздоравливают, конечно при условии адекватного дозирования и результативности поддерживающей и заместительной терапии с учетом применения иммунных препаратов и гомеопатических средств. По отношению к инвазионным заболеваниям, наоборот, применяются зарекомендовавшие себя препараты.

При заражении стрижей трихомонозом хорошо помогает метронидазол в виде коммерческого препарата Клион. При заражении стрижей эктопаразитами – препараты на основе пиретроидов, а при заражении стрижей гельминтами – празинквантел или фенбендазол. Среди заместительной и поддерживающей терапии применяются такие препараты, как Рингера Локка, физиологический раствор, глюкоза 5%-я, водорастворимые витамины, аспарагинат К и Mg, глюконат кальция. Препараты вводятся подкожно, а некоторые – внутримышечно. Вводить подкожные растворы следует в plica alarm с двух сторон крыльев стрижа. Объем жидкости может быть от 1 до 5–7–10 мл с каждой стороны. Такое введение подогретых растворов особенно актуально при кахексии и обезвоживании стрижа. По значимости такое введение вполне сопоставимо с введением парентеральных растворов у людей.

Внутримышечное введение препаратов следует производить через грудную мышцу с любой стороны гребня килевой кости. Имеет значение подогрев ослабленных стрижей путем введения их в зону нейтрального тепла. Поэтому стрижи содержатся в брудерах с температурой воздуха +28–35 °С (смотря по индивидуальной тепловой потребности). Периодически проводится оксигенация ослабленных стрижей. Среди гомеопатических средств нами по показаниям активно применяются препараты госпиталя птиц – имуним, перпульмин, лекавис, нефрогеп, таун, аптерин, аптерин-коготь.

Гипотермия стрижей

Часть стрижей поступала в госпиталь птиц с пониженной температурой тела в слабой и средней степени – 38,9–39,5 °С. Гипотермия возникала у птиц как следствие простудных заболеваний, ослабления иммунитета (ослабляется фагоцитоз и выработка антител). Эти причины способствовали изменению микробного пейзажа птиц и даже сдвигу формулы микробов в сторону патогенных микроорганизмов. Все это в совокупности провоцировало возникновение воспалений легких, почек, ЖКТ. Также гипотермию провоцируют такие болезни как сердечная недостаточность, гипотиреоз, голодание, легочная инфекция, сепсис, мозговые травмы и любые заболевания, приводящие к иммобилизации птицы.

Стрижам в состоянии гипотермии применяли прогревание нейтральным теплом, получаемым в камере брудера, проводили ингаляцию теплым влажным воздухом, осуществляли подачу кислорода в брудер. В период согревания возможно развитие ацидоза, поэтому каждые 1,5–2 часа во время восстановления температуры тела мы вводили препарат (состав препарата расшифрован ниже), который способствует также и подъему температуры тела.

В фармакологии существует понятие терапевтической широты – это применяемые терапевтические дозы лекарственных веществ от минимальной до максимальной. В практике врача чрезвычайно важно подобрать оптимальные дозы лекарственного вещества, обеспечивающие высокий терапевтический эффект без существенных побочных эффектов. Минимальные дозы, вызывающие слабовыраженные фармакодинамические и фармакотерапевтические эффекты, назначаются при тяжелом течении болезни и пониженном жизненном уровне. Максимальные, которые наряду с выраженным терапевтическим эффектом вызывают появление негативных изменений из-за токсического действия лекарственного вещества, назначаются при недостаточно выраженном терапевтическом эффекте от введения оптимальных доз. В практике врача бывают случаи введения лекарств в дозах, укладывающихся в терапевтическую широту, вызывающих при этом необратимые изменения, и даже при применении соответствующих антидототерапевтических мер животное гибнет.

Расчет оптимальной дозы лекарственного вещества производится с учетом вида, породы, пола, возраста, физиологического состояния. Чем выше интенсивность метаболизма данного вида (породы) животного, тем в больших дозах на 1 кг веса и частоте кратности введения лекарств требует организм пациента. У молодых животных дозы повышаются на 20–30 %, у самцов – на 10–20 % выше, чем у самок. Имеет значение и тип поведения – у животных с холерическим и сангвиническим типом поведения (сильные типы высшей нервной деятельности) реактивность выше, чем у животных с третьим и четвертым типом поведения по Павлову. Дозы, таким образом, будут различаться на 10–15 % для слабого и сильного типа соответственно. В то же время гомеопатическое лекарствоведение позволяет выйти за рамки минимальных традиционных доз посредством применения последовательного разведения лекарственного вещества, тем самым увеличивая возможности при лечении гипотермий у птиц, не вызывая при этом побочных эффектов, как при применении традиционных лекарств.

Все сказанное как нельзя лучше иллюстрирует график (рис. 12), отражающий наиболее характерные показатели физиологического состояния птиц при применении терапевтических доз препаратов, применяемых в традиционной медицине и гомеопатии. В соответствии с ним мы и использовали препараты для лечения гипотермий.

гипотермия у птиц
Рис. 12. Зависимость терапевтической широты воздействия традиционных и гомеопатических лекарственных средств от концентрации действующего вещества и разведения (гомеопат.) соответственно. Линии № 1, № 2, № 3, № 4, № 5 – физиологическое состояние птиц (от худшего – №1 до хорошего – №5).

Правая верхняя часть графика показывает дозы традиционных средств, применяемых в лечении птиц, а левая нижняя часть представляет собой концентрации гомеопатических лекарственных средств по гомеопатической классификации (D – десятичные разведения, С – сотенные разведения, М – миллионные разведения). Оценку состояния птиц осуществляли при помощи общепринятых в ветеринарии методов: визуализации, пальпации, аускультации и термометрии. Окружности, пересекающие линии физиологического состояния птиц, являются терапевтической широтой как аллопатических, так и гомеопатических средств.

Высокие потенции гомеопатических средств также могут привести животное, находящееся в состоянии № 1 и № 2, к гибели. Поэтому нами была построена окружность терапевтической широты и для гомеопатического препарата. В госпиталь птиц «Зеленый попугай» из 100 % поступивших птиц около 10 % страдают гипотермией в той или иной степени. Кроме того, гипотермия у птиц возникает после применения наркоза при проведении хирургических операций. У птиц можно различить 3 степени гипотермии, с учетом их изначально высокой температуры тела – от 40–44 °С. Температура тела у птиц измеряется ректально. Слабая степень гипотермии находится в пределах 39–40 °С, промежуточная степень – 36–39 °С и глубокая степень ниже – 36 °С. Поэтому наряду с помещением птиц в зону нейтрального теплового окружения, создаваемого посредством брудера, перорально (в клюв) птицам вводится гомеопатический препарат, содержащий Gelseminum, Calcarea carbonica, Acidum phosphorica, Ferrum phosphorica, Gentiana [1]. Нужно обратить внимание, что данный препарат также помогает и при судорогах птиц без симптома гипотермии. Поэтому тот же препарат нами применяется при характерных систематических обморочных состояниях птиц с явлениями параличей и параплегий.

Указанные препараты мы получаем по стандартной гомеопатической методике [2]. Производится равномерное уменьшение концентрации путем многократного последовательного разведения (или растирания) в нейтральном растворителе (этиловый спирт) и многократного вертикального встряхивания каждого полученного разведения с использованием отдельных емкостей для каждого последующего разведения до получения требуемой дозы (потенции) из исходного сырья: Gelseminum – Желтый жасмин (эссенция из свежего корня); Calcarea carbonica – Средний слой устричных раковин; Acidum phosphoric – Фосфорная кислота; Ferrum phosphoric – Железо фосфорнокислое, Gentiana – Горечавка (Эссенция из свежего корня). Вспомогательные вещества: (сахарная крупка по ГОСТ 7060–79) до 100 г. (табл. 5).

гипотермия у птиц
Таблица 5. Порядок употребления гомеопатических средств при различных степенях гипотермии у разных видов птиц

Выпуск стрижей

Выпуск слетков стрижей составлял 90 % от полученных птенцов. Если маховые перья надломаны, то мы подперивали стрижей. Если маховые перья по каким-либо причинам загнуты, но без серьезных повреждений, то тогда мы их отпаривали крутым кипятком, восстанавливая структуру маховых перьев. После формирования очевидных морфологических летных качеств мы выходили на улицу города или другой местности, где летает много стрижей и подбрасывали птицу высоко в небо. Если птица быстро набирала ход и скрывалась в небо, как бы растворяясь при этом среди других стрижей, то мы считали свою миссию по спасению стрижей выполненной.

По сути выпуск взрослых стрижей, которые попали в беду, не отличается от вышеприведенного. Если же стриж планировал, то птицу обратно подбирали с земли и продолжали реабилитацию. Безусловно, наиболее благоприятная реабилитация в количественном отношении происходит у стрижей, которые попали в руки человека в ювенильном состоянии или вследствие заболевания инфекцией или инвазией. Можно сказать, что подавляющее большинство таких стрижей вновь увидят небо и будут жить сообразной своему виду жизнью в природе.

Как мы уже отметили выше, их процент возврата в природу оценивается нами, как приближающийся к значению 90 %. Большинство остальных случаев относится к трудно излечимому рахиту. Не столь радужные перспективы присутствуют и у травматологических больных.

Реабилитация черных стрижей
Таблица 6. Реабилитация черных стрижей
Успешность реабилитации черных стрижей
Рис. 13. Успешность реабилитации черных стрижей.

Из таблицы 6 и рисунка 13 видно, что хирургические больные стрижи менее всего поддаются реабилитации, так как, в итоге птицы после полученных травм должны полностью восстановить свои летательные способности и улететь. Если же стриж остается инвалидом, то продолжительность его жизни зависит только от терпения человека, который согласится их постоянно кормить в клюв, как детей. Максимальный срок долготерпения таких людей нами отмечался на протяжении одного года. Именно поэтому процент гибели в общем-то живых, но неспособных к условиям жизни на воле, стрижей настолько высок.

За время работы получен один возврат, после трех лет жизни птицы на воле. Все выпускаемые птицы кольцевались номерными и цветными кольцами. Выпуск осуществлялся путем подбрасывания птицы в воздух, с крыш городских и сельских строений, а также с высоко поднятой руки, когда человек находился на высокой лестнице – 3–4 метра от земли. Или выпуск осуществлялся стоящим человеком на поле. Произведено 13 относительно долговременных наблюдений за выпущенными птенцами и одной взрослой особи. Птенцы с первой минуты выпуска хорошо летают, могут ловить насекомых и скрываться от хищников.

Одно уникальное наблюдение – во время выпуска стрижа в сельской местности, когда птенец набрал высоту более 30 метров, сверху на него произвел атаку чеглок, стриж резко увернулся от него, опустившись сначала к земле, и потом вновь взмыл ввысь выше сокола. Чеглок погоню не возобновил, видимо потеряв стрижа из виду. Однако были и противоположные наблюдения, в частности выпущенный стриж на спортивном поле в г. Москве подвергся нападению чеглока (Falco subbuteo), и не смотря на то, что увернулся, чеглок все равно его поймал.

На основании наблюдений за выпуском и вылетом птенцов из диких гнезд, нами установлено, что выпуск человеком, вышеуказанным способом и вылет птенца из-под крыши дома или дупла дерева (где также гнездятся стрижи) вполне согласуются и практически ничем не отличаются, главным критерием при выпуске может служить температура воздуха, высота и сила ветра. Если птенец выпускается с высоты менее 4-х метров, то в естественных условиях он нередко оказывается на земле, что приводит его к гибели, если не отследить момент приземления. Поэтому иногда практикуется еще выпуск стрижей с большей высоты. При выпуске также надо отследить, набрал ли стриж высоту, т.к. многие травматологические стрижи, выпущенные после лечения, могут пролететь до 200 метров, но при этом не набрать высоты и спланировать на землю.

Дрессировка, как последняя надежда для стрижей-инвалидов

Стрижи ловят добычу только в полете и не могут питаться как другие птицы из кормушки. Впрочем, мы провели ряд исследований по выработке условного рефлекса и при выкармливании нам удалось в четырех случаях приучить стрижей так, что они самостоятельно начинали брать корм из плошки. В одном случае стриж, сидя на краю плоской чашки с кормовой смесью, падал всем корпусом в кормушку, загребая клювом кормовую смесь. После этого он выпрямлялся и проглатывал комок. В другом случае стриж, сидя на поставленной плошке под углом атаки примерно 70 градусов, самостоятельно хватал корм. Часть этой работы представлена у нас в фильме «стрижи». В последующем мы хотим выработать другой условный рефлекс, а именно добиться того чтобы стриж не ждал, когда перед ним поставят миску с кормом, а сам подходил к ней. Однако эта работа спорна, но имеет смысл в рамках изучения выработки новых условных рефлексов черных стрижей.

Выводы

  1. По кормлению стрижей наиболее эффективным способом является кормление их смешанными кормами с обязательным присутствием большой доли насекомых. Также небесполезно добавлять свежую кровь в мешанку для стрижей. Стрижей лучше помещать в брудер при температуре от 28 до 34–35 градусов тепла, в зависимости от состояния принесенных стрижей. Выпускать стрижей следует как с человеческого роста, со стремянки, или даже с высоты несколько этажей, при этом следует следить за полетом стрижа, с тем чтобы его можно было подобрать и повторить опять курс реабилитационных работ.
  2. При применении антибактериального лечения следует обязательно учитывать чувствительность и противопоказания каждого конкретного антибиотика к каждому индивидууму.
  3. Наиболее перспективны для выпуска птиц выкормленные птенцы, а не травмированные.
  4. При надломах маховых перьев их можно подперить, а при нарушении структуры маховых и рулевых перьев – их можно восстановить крутым кипятком.
  5. При переломах конечностей лучше всего применять внешние иммобилизирующие повязки.
  6. У стрижей обнаружены такие инфек-ционные и инвазионные заболевания, как орнитоз, микоплазмоз, сальмонеллез, трихомоноз и гельминтозы.

Существует возможность перевода стрижей в режим домашних птиц (pets animals), для этого следует применить дрессировку для обучения самостоятельному питанию. В качестве методов можно употреблять основные принципы дрессировки, использующиеся при обучении других видов птиц.

Романов В.В.
Байкальский зоологический журнал. 2015. № 1 (16). С. 43-55.

Литература

1. Романов В.В. 2009 г. Патент «Лечение гипотермий и судорог у птиц». РФ № 2445104
2. Романов В.В. Черный стриж (Apus apus) в сезонном приюте – госпитале для стрижей 2012 г. http://
www.birdsassociation.ru/unit-chernyj-strizh-apus-apusv-sezonnom-prijute-gospitale-dlja-strizhej
3. Швабе В. Гомеопатические лекарственные средства. Руководство по описанию и изготовлению.
– М., 1967. – С. 12–38.

Добавить комментарий

error: Content is protected !!